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    細胞周期檢測（流式細胞術）

    發(fā)布時間： 2022-10-18　　點擊次數(shù)： 2316次

    原理


    流式細胞周期檢測是一種常見的檢測細胞增殖情況的方法之一，細胞在不同周期時，其內(nèi)的DNA含量不同。碘化丙啶（PI）作為一種核酸嵌入型染料，能夠進入固定后的細胞中，與細胞內(nèi)的核酸結合，其熒光強度與DNA含量成正比。通過流式細胞儀檢測不同細胞中的熒光強度，從而判定不同組別中細胞周期發(fā)生的變化。


    用途


    檢測不同組別或處理對某種細胞周期的改變。


    材料與儀器


    【器材】
    流式細胞儀、移液器、槍頭、離心管、離心機、流式細胞儀、水浴鍋、流式管、濾頭；
    【試劑】0.25％ 胰蛋白酶溶液、PBS、RNA酶、PI染液、70％ 乙醇溶液（建議提前放入負二十預冷）；


    步驟


    1.以腫瘤細胞為例，將正常生長的對照或處理組腫瘤細胞計數(shù)，每組取2×105-3×105個細胞鋪板，待細胞貼壁后，將正常培養(yǎng)基替換為無血清1640培養(yǎng)基，同步化20 h，使得所有細胞都進入相同的細胞周期時期；同步完后，將培養(yǎng)基重新替換為正常含血清培養(yǎng)基，繼續(xù)培養(yǎng)24 h；
     
    2.用不含EDTA的胰酶將細胞消化，收集細胞，300 g，離心3 min；用吸引器去除培養(yǎng)基，用PBS清洗細胞一次，再次300 g，離心3 min；去除PBS，用提前預冷的70%酒精重懸細胞沉淀，4℃固定過夜；
     
    3．4℃，1000 g，離心3-5 min，去除酒精，用PBS清洗3遍，最后一遍去除PBS；加入300 μL PBS，輕輕吹打，重懸細胞沉淀，加入相應量的Rnase至終濃度100 μg/mL，37 ℃水浴鍋中消化30 min；
     
    4．上機前加入PI（5 mg/mL）至終濃度50 μg/mL，避光孵育15 min；孵育完后，過300目細胞篩，上機檢測；
     
    5.分析數(shù)據(jù)。
      


    注意事項


    1. PI為致癌物質(zhì)，避免用手直接接觸。

    2. 細胞數(shù)目應該達到2x104個，細胞數(shù)目過少影響實驗結果的準確性。
     
    3.鋪板的細胞數(shù)量以收獲細胞時有足夠的生長空間來動態(tài)調(diào)節(jié)，現(xiàn)在的流式細胞儀靈敏度很高，不需要太多的細胞。
     
    4. 在制備時，要清洗干凈酒精，特別注意清洗過程中細胞的損失。離心次數(shù)不宜過多，防止細胞丟失。
     
    5. 可以用未處理的細胞調(diào)試流式細胞儀。
     
    6.胰酶不加EDTA

     


    常見問題


    Q:酒精固定后細胞難以沉淀下來，導致細胞丟失較多；

    A:可適當延長離心時間和轉(zhuǎn)速。


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